Medicinsk Chemical Corporation




Tilsigtet brug

De kits til Para-Fix ™ afføring kollektion giver en standardiseret metode til utrænede personale til korrekt indsamle og opbevare afføringsprøver til påvisning af indvoldsorm æg og larver, protozoer trofozoitter og cyster, oocyster coccidielinier og mikrosporidieinfektion sporer. Et ark af ti sprogundervisning er tilvejebragt for at hjælpe patienter og sundhedspersonale med den korrekte brug af de kits derhjemme eller i indstillingen sundhedspleje.

Opsummering og forklaring

Diagnosen tarm parasitære infektion bekræftes af inddrivelse af indvoldsorm æg og larver, protozoer trofozoitter og cyster, oocyster coccidielinier og mikrosporidieinfektion sporer. Evnen til at opdage og identificere tarmparasitter i prøven af ​​friske afføring afhænger af den umiddelbare indsamling, transport og laboratorieundersøgelser; Ofte kan ikke garanteres disse tid krav fra undersøgelsen af ​​prøven passage.



Junod, i 1972, beskrevet anvendelsen af ​​SAF (natriumacetat-eddikesyre-formalin) som en alsidig middel til at bevare tarmparasitter. Scholten og Yang, i en undersøgelse af mere end 900 eksemplarer, bekræftede egnetheden af ​​SAF til rutinemæssig anvendelse i kliniske parasitologi laboratorium.

Korrekt brug af SAF kit sikrer bevarelse og den korrekte identifikation af alle faser af tarmparasitter. SAF giver permanente pletter og koncentration procedurer, der skal udføres på en enkelt prøve. Den rene hætteglas bruges til undersøgelse af fedt afføring, okkult blod, enterisk eller amøbe kultur i et eksemplar fri for konserveringsmidler.

sættets indhold
  • 1 flaske (15 ml) SAF
  • 1 hætteglas eller rent (15 ml) af 10% formalin
  • 1 ark af instruktioner på 10 sprog
Ikke Forudsat
  • ethylacetat, saltopløsning
  • applikatorer og vatpind
  • overførselspipetter
  • centrifuge
  • objektglas og dækglas
  • mikroskop
Prøvetagning
  • Indsamling af fækale prøver af tarmparasitter skal altid udføres inden brug af antacida, barium, bismuth, obstiperende medicin, eller olieholdige afføringsmidler.
  • For den rutinemæssige undersøgelse for skadedyr før behandling, mindst tre prøver, indsamles hver anden dag, anbefales. To af prøverne skal indsamles efter normale bevægelser, og en efter en afføringsmiddel såsom magnesiumsulfat eller Phosphoral flåder. Hvis patienten har diarré, skal du ikke bruge et afføringsmiddel.
  • Afføringsprøver skal indsamles på en stor, ren beholder og mundtørhed. En halv pint beholder voksbehandlet pap med et lufttæt låg er ideel, men en ren, tør mælkekarton med de øverste to tredjedele fjernet er acceptabel. bør undgås forurening med urin.
  • Små prøver af prøven skal placeres i hætteglasset ved hjælp af spork integreret i låget. Vær særlig opmærksom på områder, der vises blod eller våde. Tilføj prøver indtil væskeniveauet når det røde "fyld line". Dette vil sikre en passende forhold på 12:57 af fiksativ til prøve.
  • Brug spork at blande indholdet i hætteglasset. Luk flasken, og sørg dækslet er sikker. Ryst hætteglasset, indtil indholdet er godt opblandet (opløsningen skal vises homogen).
  • Udfylde patientinformation på siden af ​​hver flaske. Luk flaskerne i plastpose.
  • Advarsel: Hver prøve skal behandles som en potentiel kilde til forurening.

Prøve eksamen

Anvendelsen af ​​kittet tillader en række undersøgelsesprocedurer selv med grov undersøgelse (kun hvis sættet indeholder et rent hætteglas), direkte mikroskopisk undersøgelse, koncentrering, og permanent farvning.

brutto undersøgelse
Undersøge indholdet af det rene hætteglas (prøve uden konserveringsmidler) og registrere prøvens størrelse, tilstedeværelsen af ​​orme eller proglottids, og blod, hvis til stede.

mikroskopisk undersøgelse

  • Wet udtværet direkte: Formålet med denne procedure er at demonstrere trofozoit motilitet. Forbered udstrygninger ved at blande en lille mængde af fækalt materiale (ca. 2 mg) med en dråbe fysiologisk saltvand eller iod D 'Antoni på et objektglas. Dæk med en glasplade 22 med 22 mm. Undersøg straks ved hjælp af energibesparende mål (10X). mistænkelige objekter kan undersøges med den høje tørre mål (40X).

  • Koncentration og procedure permanent plet
    Rør indholdet grundigt SAF flaske.
    • Sætte en presset gaze lag eller to lag gaze stof i en tragt. Stamme omkring halvdelen af ​​indholdet i hætteglasset gennem gaze i et 15 ml centrifugerør. Tilføj saltvand, indtil niveauet i røret er næsten i toppen og der centrifugeres ved 500 x g i 10 minutter.
    • Der bør være omkring 1 ml sediment i røret. Hvis ikke, re-suspendere sediment og tilføje eller fjerne evt, og centrifuger. Dekanteres. Hvis supernatanten ikke lysebrun eller transparent, en anden vask med saltopløsning er valgfrit. I manipulation af prøven kan give et tab af organismer.
    • Bland sedimentet og forberede et dias som følger:
    • Sætte en lille dråbe Mayer æggealbumin (følger med hvert enkelt tilfælde af SAF) på et objektglas og tør, således at et tyndt lag tilbage. Bemærk: overskuddet af albumin på objektglasset vil forårsage en rødlig tone efter misfarvning.
    • Placer en lille prøve af suspenderet sediment på albumin-coatede objektglas. Prøven fordeles på dias for at gøre en tynd smøre, som varierer i tykkelse. Tillad at tørre ved stuetemperatur (smear vises uigennemsigtig når den er tør).
    • Fortsæt med farvningen foretrukne metode. Vi anbefaler jernhematoxylin metode, selvom også anvendt metoden ifølge Gomori trichrom. Fortsæt med proceduren koncentration med den resterende sediment.
    • Resuspender aflejringer på bunden af ​​røret med 10% formalin, fylde den halvt fyldte rør. Tilsæt ca. 3 ml ethylacetat eller ethylether og hætte. Hold røret, så at hætten er rettet væk fra dit ansigt og rystes kraftigt i 30 sekunder.
    • Centrifuger ved 500 x g i 10 minutter.
    • Fjern forsigtigt hætten. Den resulterende opløsning bør have fire lag:
    • overlegen: ethylacetat eller ethylether
      sekund: plugvragrester
      tredje: formalin
      Den fjerde: sedimenter

    • Løsn proppen af ​​vragdele med en applikator pind og bosætte al væsken. Mens røret stadig er inverteret, ring debris fra siderne af røret med et eller to vatpind applikatorer. Dette vil fjerne ethylacetat eller rester efterladt.
    • Resuspender remanensen sediment med et par dråber saltvand eller 10% formalin. Brug saltvand eller jod understøtter til mikroskopisk undersøgelse.

    Hvis du bruger en Para-Fix ™ Para-Sed ™ bruge følgende procedure. Hvis du bruger Sed-Connect ™ eller Micro-Sed ™ følge de procedurer, der følger med disse elementer.

    • Omrør indholdet af hætteglasset SAF. Fortsæt med prøve behandlingsinstruktioner i brugsanvisningen Para-Sed ™ Kit. Indsæt følgende procedure mellem punkt 5 og 6:
    • Indstil væskeniveauet i flasken til at fylde linje på Para-Sed ™ rør med fysiologisk saltopløsning.
    • Placer skruelåg forsynet med Para-Sed ™ on konisk centrifuge flaske og centrifuger ved 500X i 10 minutter.
    • Hæld forsigtigt supernatanten.
    • Tilføj en lille dråbe saltvand og blandes sedimentet med en applikator pind. Forbered et objektglas som beskrevet i trin 4 til 6 i det foregående afsnit.

  • farvede permanente udstrygninger med jernhematoxylin:
    • Placer dias i 70% alkohol i 5 minutter.
    • Vask i hanevand i to minutter.
    • Sat i Kinyoun plet (MCC Cat # 483A) i 5 minutter. *
    • Vask i rindende vand i 1 minut. *
    • Tør filmen i syre-alkohol blegning i 4 minutter. **
    • Vask dias i rindende vand i 1 minut. *
    • Læg i jernhematoxylin (MCC Cat # 6185A og 6188A), der arbejder løsning i 8 minutter.
    • Vask objektglasset i destilleret vand i 1 minut.
    • Sted slide i 0,6% picrinsyre (MCC Cat. # 733A) opløsning i 3 til 5 minutter.
    • Vask dias i rindende vand i 10 minutter.
    • Anbring objektglassene i 70% alkohol, mere ammoniak i 3 minutter.
    • Anbring objektglassene i 95% alkohol i 5 minutter.
    • Placer slides i 100% alkohol i 5 minutter.
    • Anbring objektglassene i to skift af xylen (eller xylen erstatning) i 5 minutter.
    • Monteret med montering medier ved hjælp af # 1 dækglasset tykkelse.

    * Hvis laboratoriet ikke er på udkig efter Cryptosporidium kan du udelades disse trin.

    ** Dette trin kan udføres som følger:

    • Placer dias i en blegning syre-alkohol i 2 minutter.
    • Vask objektglasset i rindende vand i 1 minut.
    • Placer dias i en blegning syre-alkohol i 2 minutter.
    • Vask objektglasset i rindende vand i 1 minut.
    • Fortsæt med trin 7 i farvningsproceduren.

  • farvede permanente udstrygninger af Wheatley Gomori trichrom:
    • Placer objektglasset fremstillet i 70% ethylalkohol i 2 til 5 minutter.
    • Sat i trichrom i 10 minutter.
    • Dyp to gange i 90% ethanol med eddikesyre ved 0,5% eller 90% ethanol, hvis slide forekommer bleg.
    • Sat i to skift af 100% alkohol for 2 til 5 minutter.
    • Sat i to hold xylen eller erstatter 5 til 10 minutter.
    • Monter med montering medium ved hjælp af en # 1 af tykt dække glas.
forholdsregler
  • ethylacetat og diethylether er brandfarlig. Anvendelse i godt ventileret område. Holdes væk fra åben ild. Undgå kontakt af opløsningen med hud og øjne. Bør kontakte forekomme flugter med rindende vand. Undgå at indånde dampene.
  • Undgå kontakt af SAF opløsning med hud eller øjne. I tilfælde af kontakt, skyl det berørte område med vand. Ved irritation søge øjeblikkelig lægehjælp.
  • SAF løsning er giftig. Ved indtagelse, drikke mælk eller vand. Søg straks lægehjælp.
  • Hver prøve skal behandles som en potentiel kilde til infektion. Den gode laboratoriepraksis bør følges på alle tidspunkter. Det anbefaler brug af handsker og vaske hænder.
stabilitet

Udløbsdatoen for hver kit er trykt på den ydre etiket. Udløbsdatoer er trykt på etiketten af ​​hvert hætteglas af den enkelte hætteglas. Kittene skal opbevares ved stuetemperatur. Hvis SAF flaskerne udsættes for frostgrader i en længere periode kan fryse. Hvis flaskerne gendannes til stuetemperatur, vil der ikke være nogen ændring i ydeevne.

bibliograf
  • Brooke M. M., 1974. "tarm og urogenitale protozoer", Manual of Clinical Microbiology, ASM, Washington, anden udgave, 582-601.
  • Garcia, L. S., 2001. Diagnostic Medical Parasitologi; 4th Edition. ASM Press: Washington, D.C.
  • Junod, L. 1972. Teknisk Coprologique Novelle essentiellement Destinee i koncentrationen des trofozoiter af Amibes. Bul. Soc. Pathol. Exot, 65:. 390-398.
  • Scholten, T., 1972. En forbedret teknik til genopretning af den intestinale protozoer. J. Parasitol. 58: 603-634.
  • Yang, J., og Scholten, T., 1977. et fiksativ for tarmparasitter, som tillader anvendelse af koncentrationen og permanente farvningsprocedurer. Am. J. Clin. Pathol, 67:. 300-304.


Efterlad en kommentar